Conference Service Mandl

abstract: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

abstract: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

abstract: Hochzelldichte-Kultivierung von Escherichia coli und Primäraufarbeitung Im 1. Teil (#862021) dieses Workshops wird in Kleingruppen eine Hochzelldichte-Kultivierung im Laborbioreaktor durchgeführt und die jeweiligen Themen in Theorie und Praxis behandelt. Im 2. Teil (#862022) werden verschiedene Methoden der Primäraufbereitung in Theorie und Praxis behandelt. Sie können diese Teile einzeln oder zusammen unter der Nummer #862023 belegen. Zielgruppe: Besonders angesprochen sind Biologen, Biochemiker, Chemiker, Biotechnologen, Ingenieure und technische Angestellte mit Grundkenntnissen in Mikrobiologie, Kultivierung von Mikroorganismen und Molekularbiologie, die als Praktiker im Labor Bioreaktoren oder die Aufarbeitung von Fermentationsprodukten betreiben oder betreiben wollen. Wichtige Grundlagen vermitteln wir Entscheidungsträgern und Laborleitern im Bereich Biotechnologie, Pharmabiotechnologie, Enzymgewinnung. Inhalte: Schwerpunkte sind eine effiziente Kultivierung zu hohen Zelldichte

abstract: Hochzelldichte-Kultivierung von Escherichia coli und Primäraufarbeitung Im 1. Teil (#862021) dieses Workshops wird in Kleingruppen eine Hochzelldichte-Kultivierung im Laborbioreaktor durchgeführt und die jeweiligen Themen in Theorie und Praxis behandelt. Im 2. Teil (#862022) werden verschiedene Methoden der Primäraufbereitung in Theorie und Praxis behandelt. Sie können diese Teile einzeln oder zusammen unter der Nummer #862023 belegen. Zielgruppe: Besonders angesprochen sind Biologen, Biochemiker, Chemiker, Biotechnologen, Ingenieure und technische Angestellte mit Grundkenntnissen in Mikrobiologie, Kultivierung von Mikroorganismen und Molekularbiologie, die als Praktiker im Labor Bioreaktoren oder die Aufarbeitung von Fermentationsprodukten betreiben oder betreiben wollen. Wichtige Grundlagen vermitteln wir Entscheidungsträgern und Laborleitern im Bereich Biotechnologie, Pharmabiotechnologie, Enzymgewinnung. Inhalte: Schwerpunkte sind eine effiziente Kultivierung zu hohen Zelldichte

abstract: Hochzelldichte-Kultivierung von Escherichia coli und Primäraufarbeitung Im 1. Teil (#862021) dieses Workshops wird in Kleingruppen eine Hochzelldichte-Kultivierung im Laborbioreaktor durchgeführt und die jeweiligen Themen in Theorie und Praxis behandelt. Im 2. Teil (#862022) werden verschiedene Methoden der Primäraufbereitung in Theorie und Praxis behandelt. Sie können diese Teile einzeln oder zusammen unter der Nummer #862023 belegen. Zielgruppe: Besonders angesprochen sind Biologen, Biochemiker, Chemiker, Biotechnologen, Ingenieure und technische Angestellte mit Grundkenntnissen in Mikrobiologie, Kultivierung von Mikroorganismen und Molekularbiologie, die als Praktiker im Labor Bioreaktoren oder die Aufarbeitung von Fermentationsprodukten betreiben oder betreiben wollen. Wichtige Grundlagen vermitteln wir Entscheidungsträgern und Laborleitern im Bereich Biotechnologie, Pharmabiotechnologie, Enzymgewinnung. Inhalte: Schwerpunkte sind eine effiziente Kultivierung zu hohen Zelldichte

abstract: Ziel des Kurses ist es, das Verständnis der Interaktion Wirkstoff - Organismus auf molekularer Ebene zu fördern. Dabei werden erwünschte pharmakologische Effekte und toxische Wirkungen einbezogen. Schwerpunkte sind: - Zielstrukturen medizinisch wirksamer Moleküle: Enzyme - Ionenkanäle - Rezeptoren - Pharmakologische Wirkungen: Agonisten - Antagonisten - parzielle Agonisten, inverse Agonisten - Ableitung und Auswertung von Dosis-Wirkungskurven - Pharmakokinetische Prozesse: Absorption, Verteilung, Metabolismus, Elimination - Pharmakokinetische Modelle - Einführung in die computergestützte Wirkstoffentwicklung Zielgruppe: Chemiker, Pharmazeuten, andere Naturwissenschaftler, Chemieingenieure, Chemisch-technische Mitarbeiter Kursleiter: Prof. Dr. Michael Wiese Kurssprache: deutsch

abstract: Ziel des Kurses ist ein mechanistisches Verständnis der Giftwirkung chemischer Fremdstoffe. Im Vordergrund stehen Grundprinzipien der von chemischen Substanzen ausgelösten toxikologischen Prozesse. Dabei geht es insbesondere um die Bedeutung der Moleküleigenschaften der Stoffe und der mit ihrer Struktur verknüpften Reaktivitätsprofile für Schadwirkungsmechanismen. Die biologische Schadwirkung chemischer Stoffe wird ausgelöst durch molekulare Wechselwirkungen mit chemischen Komponenten des Organismus. Hierbei spielen häufig sowohl der Aufnahmeweg und die Stoffverteilung im Organismus als auch einfache chemische Reaktionen mit körpereigenen Molekülen (DNA, Proteine, Membranbestandteile) eine Rolle. Die Biotransformation der Stoffe zu Metaboliten kann dabei neben einer möglichen Entgiftung auch zu einer ggf. starken Erhöhung der Toxizität führen. Unter Einbeziehung zahlreicher Beispiele der toxikologischen Wirkung chemischer Stoffe und ihrer Ursache werden folgende Themenschwerpunkte be

abstract: Die BIOTECHNICA in Hannover ist die Leitveranstaltung der europäischen Biotech-Branche. Mit der Kombination aus Ausstellung, Konferenzen, PARTNERING und dem EUROPEAN BIOTECHNICA AWARD bietet sie eine jährliche Plattform für konkrete Produktpräsentationen und Geschäftsanbahnungen sowie zum Networking und Wissensaustausch. Sie bildet alle Sparten der Biotechnologie ab - von Biotechnik über Equipment, Bioinformatik und Dienstleistungen bis hin zu den Anwendungsbereichen Pharma/Medizin, Chemie, Ernährung, Landwirtschaft und Umwelt.

Seit 1985 wird die BIOTECHNICA von der Deutschen Messe am Messeplatz Hannover veranstaltet. Neben der Mutterveranstaltung in Hannover finden in 2008 auch die BIOTECHNICA AMERICA (26. bis 28. März 2008) in Philadelphia und die zweite BIOTECH CHINA (28. bis 30. Mai 2008) in Shanghai statt.

abstract: Der Kurs führt die Teilnehmer durch die modernen Trenntechniken für Peptide und Proteine mit den Schwerpunkten HPLC und Probenvorbereitung sowie Massenspektrometrie und Datenauswertung / Spektreninterpretation. Weiterhin werden massenspektrometrische Ansätze zur Quantifizierung und Identifikation von Proteinen besprochen. Datenvorbereitung und Datenanalyse (Bioinformatik) formen einen weiteren Teil dieses Kurses. Beispiele aus der Praxis, insbesondere bezogen auf „Biomarker Discovery“ werden gebraucht, um diese Themen zu verdeutlichen. Der Kurs wird allen Anwendern empfohlen, die sich mit Proteomics oder der Analyse komplexer Peptid- und Proteinmischungen befassen. Referent: Prof. Dr. Rainer Bischoff

abstract: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

abstract: Einsatz der Lichtmikroskopie in der mikrobiologischen Qualitätskontrolle Die mikroskopische Prüfung steht am Beginn der Identifizierung von Mikroorganismen. In der mikrobiologischen Qualitätskontrolle ist daher ein routinierter Umgang mit dem Lichtmikroskop unverzichtbar. Der Kurs vermittelt Grundlagen und Methoden der Lichtmikroskopie, die von den Teilnehmern praktisch am Mikroskop zur Charakterisierung von Mikroorganismen umgesetzt werden. Zielgruppe MitarbeiterInnen aus dem Bereich Qualitätssicherung | Qualitätskontrolle in der pharmazeutischen Industrie und der Lebensmittel- und Getränkeindustrie. Inhalte Theoretische Inhalte: * Grundlagen der Lichtmikroskopie * Lichtmikroskopische Kontrastverfahren * Fluoreszenzmikroskopie | Anwendungsbeispiele * Charakterisierung von Mikroorganismen mit dem Lichtmikroskop Praktische Arbeit: * Optimale Einstellung des Mikroskops | 'Köhlern' * Mikroskopieren vorgefertigter Präparate * Untersuchung unterschiedlich

abstract: Ziel des Kurses ist die selbstständige Durchführung der analytischen und mikropräparativen zweidimensionalen (2D) Elektrophorese einschließlich Probenaufbereitung, computerunterstützter Bildauswertung sowie Proteindatenbankrecherchen im Internet. Schwerpunkte sind: - Grundlagen der 2D Elektrophorese mit immobilisierten pH-Gradienten (IPGs) - Neueste Entwicklungen auf dem Gebiet der 2D Elektrophorese (enge und weite pH-Gradienten, vergrößerte Trenndistanzen, 2D Elektrophorese stark basischer Proteine, Automatisierung, Proteindetektion, Datenbanken) - Difference Gel Electrophoresis (DIGE) - Probenaufbereitung, Proteinsolubilisierung, Vorfraktionierung - Herstellung von IEF-Gelen mit immobilisierten pH-Gradienten - Automatisierung: Fertiggele für die Routineanalytik; IPGphor - Isoelektrische Fokussierung (IEF): Rehydratisierung der IPG-Strips; Optimierung des Probenauftrags, des Probenvolumens, des Probeneintritts und der Fokussierungsbedingungen - Proteintransfer von der ersten auf

abstract: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie einzelne Proteine aus einem Proteingemisch mittels Antikörper nachweisen können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE) * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Optimierung der Erst- und Zweitantikörper * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Methoden zur Qualitätskontrolle (Coomassie-Färbung und Immunpräzipitation) * Spezielle Anwendungen: Kernextrakte und Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Western-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Western-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Proteinen.

abstract: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie mRNA einer bestimmten Sequenz in ihrer RNA-Probe mittels Hybridisierungssonden nachweisen und quanitifizieren können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Denaturierende-Gelelektrophorese * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Synthese und Optimierung der DNA- und RNA-Sonden * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Northern-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Northern-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Nukleinsäuren.

abstract: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie bestimmte DNA-Sequenzen einer DNA-Probe mittels Hybridisierungssonden nachweisen und quanitifizieren können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Gelelektrophorese * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Synthese und Optimierung der Hybridisierungssonden * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Southern-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Southern-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Nukleinsäuren.

abstract: Kursleiter: Prof. Dr. Carsten Schmuck

abstract: In der Fermentationstechnik (Bioreaktionstechnik, Bioverfahrenstechnik) arbeiten viele Disziplinen zusammen. Mikrobiologen, Biochemiker, Zellbiologen und Verfahrensingenieure suchen nach einem Weg, das Wachstum der Zellen (Katalysatoren) bzw. die Produktbildung möglichst optimal zu gestalten. Für fermentative bzw. biotechnologische Prozesse benötigt man insbesondere Geräte und Verfahrensstrategien, die im Seminar ausführlich erläutert werden. Ein Biologe wird die biologische/biochemische/gentechnische Seite der Bioreaktionstechnik vorstellen und ein Ingenieur wird die technischen Lösungen der Bioreaktionstechnik präsentieren.

abstract: Europe in their sixth, fifth and second year respectively. To accommodate even more talks this year the Screening and MedChem conferences will be extended to three days. This year's event will take place in the exciting city of Berlin. These conferences will be co-located and registered delegates will have access to all three meetings ensuring a very cost-effective trip. Keynote Speakers: Screening Stephen Rees, Director, Screening Compound Profiling GSK, UK Doriano Fabbro, Head of New Technologies Novartis Biomedical Research Institute Alexander Levitzki, Professor of Biochemistry, The Hebrew University of Jerusalem Julio J Martin, Manager Screening and Compound Profiling GSK, Spain MedChem Hugo Kubinyi, Retired Professor University of Heidelberg ADMET Richard Walmsley, Professor of Genetics Manchester University Topics including but not limited to: Screening: High Content Screening Advances in Liquid Handling Label Free Screening Drug targets: - Protein Kinases - GPCRs - Ion Channels MedChem: Chemogenomics Fragment Based Lead Discovery Compound Management Formulation and Solubility ADMET: Microdosing Metabonomics Hepatotoxicity High-throughput and in-silico approaches Current in-vivo and in-vitro strategies

abstract: Frontiers in Medicinal Chemistry - Joint German-Swiss Meeting on Medicinal Chemistry

abstract: Molecular and cellular Mechanisms of Memory