Konferenzservice Mandl

Zusammenfassung: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

Zusammenfassung: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

Zusammenfassung: Der Kurs führt die Teilnehmer durch die modernen Trenntechniken für Peptide und Proteine mit den Schwerpunkten HPLC und Probenvorbereitung sowie Massenspektrometrie und Datenauswertung / Spektreninterpretation. Weiterhin werden massenspektrometrische Ansätze zur Quantifizierung und Identifikation von Proteinen besprochen. Datenvorbereitung und Datenanalyse (Bioinformatik) formen einen weiteren Teil dieses Kurses. Beispiele aus der Praxis, insbesondere bezogen auf „Biomarker Discovery“ werden gebraucht, um diese Themen zu verdeutlichen. Der Kurs wird allen Anwendern empfohlen, die sich mit Proteomics oder der Analyse komplexer Peptid- und Proteinmischungen befassen. Referent: Prof. Dr. Rainer Bischoff

Zusammenfassung: Zielgruppe: Mitarbeiter/-innen der chemischen und pharmazeutischen Industrie, Behörden und Institute mit Aufgabenschwerpunkt in F & E Voraussetzungen: Grundkenntnisse der Organischen Synthesechemie Ziele / Nutzen: Ein fundiertes Wissen zur Darstellung organischer Verbindungen und deren gezielte Strukturaufklärung ermöglichen jeder Fachkraft einen erweiterten Handlungs- und Entscheidungsspielraum im Labor. Die Teilnehmer erhalten umfassende Kenntnisse zur präparativen organischen Synthese sowie Analysetechniken zur direkten Anwendung im F&E-Labor anhand von anwendungsorientierten Beispielen. Inhalt: Modul 1 (6 Wochen): Reaktionen, Mechanismen, spektroskopische Methoden – Grundlagen der Aliphatenchemie •Substitutionen, Additionen, Eliminierungen, metallorganische Reaktionen •IR-Spektroskopie, NMR-Spektroskopie •Grundlagen der Stereochemie Modul 2 (6 Wochen): Carbonyl-, Amin- und Aromatenchemie - Schlüsselelemente der Feinchemie •Reaktionen von Carbonylverbindungen, Michael-Sys

Zusammenfassung: Einsatz der Lichtmikroskopie in der mikrobiologischen Qualitätskontrolle Die mikroskopische Prüfung steht am Beginn der Identifizierung von Mikroorganismen. In der mikrobiologischen Qualitätskontrolle ist daher ein routinierter Umgang mit dem Lichtmikroskop unverzichtbar. Der Kurs vermittelt Grundlagen und Methoden der Lichtmikroskopie, die von den Teilnehmern praktisch am Mikroskop zur Charakterisierung von Mikroorganismen umgesetzt werden. Zielgruppe MitarbeiterInnen aus dem Bereich Qualitätssicherung | Qualitätskontrolle in der pharmazeutischen Industrie und der Lebensmittel- und Getränkeindustrie. Inhalte Theoretische Inhalte: * Grundlagen der Lichtmikroskopie * Lichtmikroskopische Kontrastverfahren * Fluoreszenzmikroskopie | Anwendungsbeispiele * Charakterisierung von Mikroorganismen mit dem Lichtmikroskop Praktische Arbeit: * Optimale Einstellung des Mikroskops | 'Köhlern' * Mikroskopieren vorgefertigter Präparate * Untersuchung unterschiedlich

Zusammenfassung: Ziel des Kurses ist die selbstständige Durchführung der analytischen und mikropräparativen zweidimensionalen (2D) Elektrophorese einschließlich Probenaufbereitung, computerunterstützter Bildauswertung sowie Proteindatenbankrecherchen im Internet. Schwerpunkte sind: - Grundlagen der 2D Elektrophorese mit immobilisierten pH-Gradienten (IPGs) - Neueste Entwicklungen auf dem Gebiet der 2D Elektrophorese (enge und weite pH-Gradienten, vergrößerte Trenndistanzen, 2D Elektrophorese stark basischer Proteine, Automatisierung, Proteindetektion, Datenbanken) - Difference Gel Electrophoresis (DIGE) - Probenaufbereitung, Proteinsolubilisierung, Vorfraktionierung - Herstellung von IEF-Gelen mit immobilisierten pH-Gradienten - Automatisierung: Fertiggele für die Routineanalytik; IPGphor - Isoelektrische Fokussierung (IEF): Rehydratisierung der IPG-Strips; Optimierung des Probenauftrags, des Probenvolumens, des Probeneintritts und der Fokussierungsbedingungen - Proteintransfer von der ersten auf

Zusammenfassung: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie einzelne Proteine aus einem Proteingemisch mittels Antikörper nachweisen können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Polyacrylamid-Gelelektrophorese (SDS-PAGE) * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Optimierung der Erst- und Zweitantikörper * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Methoden zur Qualitätskontrolle (Coomassie-Färbung und Immunpräzipitation) * Spezielle Anwendungen: Kernextrakte und Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Western-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Western-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Proteinen.

Zusammenfassung: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie mRNA einer bestimmten Sequenz in ihrer RNA-Probe mittels Hybridisierungssonden nachweisen und quanitifizieren können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Denaturierende-Gelelektrophorese * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Synthese und Optimierung der DNA- und RNA-Sonden * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Northern-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Northern-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Nukleinsäuren.

Zusammenfassung: In diesem Kurs erarbeiten wir mit Ihnen, wie Sie bestimmte DNA-Sequenzen einer DNA-Probe mittels Hybridisierungssonden nachweisen und quanitifizieren können. Der Kurs umfasst dabei folgende Themenschwerpunkte: * Spezifische Probenaufarbeitung und deren Optimierung * Gelelektrophorese * Blottingverfahren und deren Einsatzgebiete * Synthese und Optimierung der Hybridisierungssonden * Detektionsverfahren und Auswertung der Analyseergebnisse * Maßnahmenkatalog zur Vermeidung häufig gemachter Fehler und Problembehebung * Membranstripping * u.v.m. In einer vertieften theoretischen Einführung werden die biochemischen Hintergründe der Southern-Blot-Technik besprochen, auf deren Basis dann auch Strategien zur Optimierung der Versuchsparameter abgeleitet werden können. Besonderen Wert legen wir dabei auf die vergleichende Diskussion verschiedener Methoden und ihrer Anwendungsgebiete in der Praxis, Maßnahmen zur Qualitätskontrolle der Versuchsschritte sowie der Vermeidung typischer Fehler bzw. Behebung häufiger Probleme bei der Durchführung von Southern-Blot-Analysen. In den praktischen Versuchen erarbeiten Sie sich dann die Fertigkeiten, die Sie für die erfolgreiche Durchführung der Analysen benötigen. Dieser Kurs erfordert grundlegende Vorkenntnisse aus der Molekularbiologie und über den Aufbau von Nukleinsäuren.

Zusammenfassung: Kursleiter: Prof. Dr. Carsten Schmuck

Zusammenfassung: In der Fermentationstechnik (Bioreaktionstechnik, Bioverfahrenstechnik) arbeiten viele Disziplinen zusammen. Mikrobiologen, Biochemiker, Zellbiologen und Verfahrensingenieure suchen nach einem Weg, das Wachstum der Zellen (Katalysatoren) bzw. die Produktbildung möglichst optimal zu gestalten. Für fermentative bzw. biotechnologische Prozesse benötigt man insbesondere Geräte und Verfahrensstrategien, die im Seminar ausführlich erläutert werden. Ein Biologe wird die biologische/biochemische/gentechnische Seite der Bioreaktionstechnik vorstellen und ein Ingenieur wird die technischen Lösungen der Bioreaktionstechnik präsentieren.

Zusammenfassung: Peptide stellen eine synthetisch und analytisch anspruchsvolle Klasse von Naturstoffen dar. Ihre wachsende Bedeutung in der Biotechnologie und die industrielle Nutzung von Enzymen und Enzymanaloga sind ebenso wie die „klassische“ Wirkstoff-Forschung auf ein tiefes Verständnis von Peptidstrukturen und ihrer biochemischen Wirkungsweise angewiesen.

Prof. Dr. Norbert Sewald von der Fakultät für Chemie der Universität Bielefeld berichtet über den Einsatz von Peptiden als Mimetica für Oligosaccharide. Die Rolle der Peptidchemie in der industriellen Produktion illustriert Dr. Jörg von Eysmondt von der Sanofi-Aventis Deutschland AG, Frankfurt, am Beispiel der Insulinproduktion gestern und heute. Bertil Hofte von Thermo Fisher Scientific in Breda (Niederlande) erläutert, welche Potenziale LC/MS-Verfahren für die Untersuchung von Peptidstrukturen bietet. Durch die Veranstaltung führt Prof. Dr. Udo Kragl vom Institut für Chemie der Universität Rostock.

Zusammenfassung: Europe in their sixth, fifth and second year respectively. To accommodate even more talks this year the Screening and MedChem conferences will be extended to three days. This year's event will take place in the exciting city of Berlin. These conferences will be co-located and registered delegates will have access to all three meetings ensuring a very cost-effective trip. Keynote Speakers: Screening Stephen Rees, Director, Screening Compound Profiling GSK, UK Doriano Fabbro, Head of New Technologies Novartis Biomedical Research Institute Alexander Levitzki, Professor of Biochemistry, The Hebrew University of Jerusalem Julio J Martin, Manager Screening and Compound Profiling GSK, Spain MedChem Hugo Kubinyi, Retired Professor University of Heidelberg ADMET Richard Walmsley, Professor of Genetics Manchester University Topics including but not limited to: Screening: High Content Screening Advances in Liquid Handling Label Free Screening Drug targets: - Protein Kinases - GPCRs - Ion Channels MedChem: Chemogenomics Fragment Based Lead Discovery Compound Management Formulation and Solubility ADMET: Microdosing Metabonomics Hepatotoxicity High-throughput and in-silico approaches Current in-vivo and in-vitro strategies

Zusammenfassung: Frontiers in Medicinal Chemistry - Joint German-Swiss Meeting on Medicinal Chemistry

Zusammenfassung: Molecular and cellular Mechanisms of Memory